Feridas e o processo de cicatrização

Um ferimento é uma interrupção de integridade anatômica, fisiológica e funcional dos tecidos do corpo, podendo ocorrer por injúrias físicas, químicas, mecânicas ou térmicas (ZAHEDI et al., 2009; SIMAS, 2010).

As feridas podem ser classificadas em limpas, limpas-contaminadas, contaminadas e infeccionadas, a depender das condições em que elas surgiram e do tempo entre a ocorrência e o atendimento. O tempo de quatro a seis horas após a lesão é considerado o “período áureo”, ou seja, quando a contaminação bacteriana ainda pode ser considerada mínima e a ferida é classificada como limpa, sendo somente considerada infeccionada após esse período (DERNELL, 2006 apud FREITAS, 2014).

Após o surgimento da ferida, e quase de imediato, inicia-se o processo de cicatrização (ACKERMANN, 2012), que corresponde a uma combinação de eventos físicos, químicos e celulares que restaura um tecido ferido ou substitui por colágeno (HEDLUND, 2007). A regeneração pode ser definida como a reconstrução de um tecido pelas células que sobreviveram à lesão tecidual, ou seja, é a restauração da forma e função do tecido (SLATTER, 1998 apud SIMAS, 2010).

De forma geral, as fases da cicatrização nos animais domésticos são três: inflamatória, proliferativa e de remodelação ou reepitelização, que ocorrem de forma simultânea e não sequencial.

Todos os mecanismos são mediados e controlados por citocinas e fatores de crescimento, que serão amplificados e modificados pelos macrófagos, células endoteliais e fibroblastos (HANKS & SPODNICK, 2005; REINKE & SORG, 2012 apud FREITAS, 2014).

Embora a cicatrização da pele ocorra de forma fisiológica, o tratamento com medidas tópicas, cirúrgicas e bandagens diminui o desconforto do paciente, o gasto do proprietário e acelera o tempo de recuperação (DEMETRIOU & STEIN, 2011 apud FREITAS, 2014).

Apesar do processo de cicatrização ser fisiologicamente similar em todas as espécies domésticas, são observadas diferenças entre as espécies canina e felina. Em cães, a fase inflamatória tende a se estabelecer mais rápido e ser mais intensa, ocorrendo eritema, edema e exsudação. Como consequência, o tecido de granulação se estabelece mais rapidamente, acelerando os processos de contração e epitelização (VOLK & BOHLING, 2013 apud FREITAS, 2014).

Apesar do processo de cicatrização ser fisiologicamente similar em todas as espécies domésticas, são observadas diferenças entre as espécies canina e felina.

Em gatos, a fase inflamatória é discreta, com poucos sinais inflamatórios, tornando a cicatrização mais lenta e com pouca formação de tecido de granulação, sendo esta a razão das feridas crônicas serem mais frequentes em felinos do que em caninos (VOLK & BOHLING, 2013 apud FREITAS, 2014). 

A nível de vascularização cutânea, em cães há uma maior organização e densidade de vasos cutâneos, principalmente no tronco, enquanto que em felinos há evidências de uma menor perfusão cutânea. A perfusão de tecidos é notoriamente associada ao processo de cicatrização (BOHLING & HENDERSON, 2006 apud LOPES, 2016).

Segundo Bohling et al. (2004), a resistência a ruptura (deiscência) de feridas suturadas após 7 dias em gatos corresponde a metade da resistência verificada em cães. Esta diferença se deve a menor produção de colágeno em gatos em fases iniciais da cicatrização por primeira intenção (BOHLING & HENDERSON, 2006); e por esse motivo, alguns autores sugerem a manutenção das suturas por mais dias após a cirurgia em gatos do que em cães (HENGEL et al., 2013).

Na cicatrização por segunda intenção destacam-se diferenças qualitativas e quantitativas entre cães e gatos. Em gatos, a formação de tecido de granulação manifesta-se mais demorada e apresenta uma coloração mais pálida. Ainda nesta espécie, o tecido de granulação tem origem inicialmente nas margens da ferida e progride lentamente em direção ao centro sobre a superfície da lesão, ao passo que em cães surge simultaneamente de todo o tecido subcutâneo exposto.

O curso da epitelização e de contração da ferida decorre também mais lentamente na espécie felina. A produção demorada e em menor quantidade de tecido de granulação leva esta espécie a apresentar ritmos de cicatrização mais lentos quando comparada com o cão (BOHLING; HENDERSON, 2006, LOPES, 2016).

A cicatrização pode ser interrompida por fatores patofisiológicos intrínsecos ou fatores extrínsecos, como influências do ambiente e manejo inapropriado (fatores iatrogênicos) (HANKS & SPODNICK, 2005 apud SIMAS, 2010).

A idade é um dos fatores que prejudicam a cicatrização, uma vez que animais mais velhos sintetizam menos colágeno, apresentam angiogênese mais lenta, atrofia da derme e atraso na epitelização. O processo de cicatrização é dependente de glicose e proteínas para ocorrer de forma adequada, portanto, animais malnutridos tendem a ter a resolução da lesão mais lenta (HANKS & SPODNICK, 2005; DEMETRIOU & STEIN, 2011 apud FREITAS, 2014).

A presença de doenças concomitantes pode gerar imunossupressão, reduzindo a resposta inflamatória efetiva para manter o processo cicatricial. Em casos mais específicos, pacientes oncológicos podem ter neoformações que se apresentam como feridas de difícil cicatrização (HANKS & SPODNICK, 2005; DEMETRIOU & STEIN, 2011 apud FREITAS, 2014).

O protocolo escolhido para o tratamento tópico varia de acordo com a causa e nível de contaminação da ferida. As soluções antissépticas são usadas para limpeza de feridas, mas também possuem características para prevenir a infecção e diminuir a contaminação (ATIYEH et al., 2009 apud FREITAS, 2014).

Forma Farmacêutica e Apresentação

Semissólido sob a forma de gel acondicionado em embalagens de 40 e 100 g.

Fórmula

Cada 100 g contém:

*Veículo contendo emolientes, lubrificantes, umectantes, espessantes e conservantes.

Informação Técnica

A Pomada Cicatrizante Ibasa é um gel glicerinado e siliconado de uso tópico de fácil aplicação e espalhabilidade, cujas principais ações são evitar a proliferação bacteriana e promover a cicatrização.

É um produto de base aquosa e, por não conter álcool na sua formulação, não irrita a pele dos animais. Além de ser de fácil espalhamento e boa aderência na pele, não mancha a pelagem do animal.

• Cloreto de Benzalcônio:

Também conhecido como Cloreto de Lauril Dimetil Benzil Amônio, é um composto de amônio quaternário. É usado como um agente antimicrobiano e surfactante na indústria, em produtos de limpeza e em preparações farmacêuticas como conservante, antisséptico e desinfetante. 

O seu amplo espectro de ação antimicrobiana abrange bactérias, leveduras, fungos, algas e micro-organismos formadores de biofilme sendo seu mecanismo de ação na modificação da permeabilidade da membrana celular dos microorganismos. (PAULINO, 2006; GERBA, 2015).

O Cloreto de benzalcônio é não irritante aos tecidos, com início rápido de ação quando aplicado sobre a pele, tendo uma ação detergente, queratolítica e emulsificante, além de atuar em ampla faixa de pH e ser facilmente degradado no ambiente (PAULINO, 2006).

• Demais constituintes da fórmula:

A Glicerina é usada em uma grande variedade de formulações farmacêuticas, sendo considerada não tóxica e não irritante. Em produtos de uso tópico, é utilizada pelas suas propriedades umectantes e emolientes.

A Hidroxietilcelulose é considerada não tóxica, não irritante, nem sensibilizante para a pele. É usada como um espessante e emulsionante em diferentes produtos (pastas antimicrobianas, pesticidas, soluções desinfetantes e estabilizantes em soluções de lágrimas artificiais e colírios) e como formador de biofilme. Também utilizada como veículo ou agente suspensor para preparações de administração endovenosa e intraperitoneal, como adsorvente em bandagens e curativos cirúrgicos e como adesivo em fitas cirúrgicas para promover a permeabilidade da umidade. Em veterinária é usada como um espessante e formador de filme em formulações.

O Óleo de silicone é um agente emoliente de caráter hidrofóbico, que é usado em produtos para a proteção da pele. Considerado não tóxico e não irritante, pode ser usado em preparações tópicas e orais.

Indicações

Indicado para cães, gatos e bovinos como antisséptico e cicatrizante nas lesões e feridas, inclusive quando há contaminação por Staphylococcus sp.

Modo de Uso

Somente uso externo. Limpar bem o local, aplicar uma fina camada do produto. Repetir a cada 24 horas.

Conservação

Conservar em local seco e fresco, protegido da luz solar e manter fora do alcance de crianças e animais.

Estudo De Eficácia do Produto

Com o objetivo de avaliar a ação antimicrobiana (antisséptica) in vitro do Produto Pomada Cicatrizante, amostras do produto foram testadas por meio da técnica Time Kill para os micro-organismos: Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, lote 0307230; Escherichia coli ATCC 25922, lote 02077033 e Staphylococcus aureus ATCC 6538P, lote 0710013 contendo cloreto de benzalcônio a 0,35 g%. Foram utilizadas diluições 1:10 e amostras sem diluir nos tempos 0, 3, 6, 9, 12, 15, 20 e 30 minutos.

A partir dos resultados é possível observar que todas as cepas testadas, nas diferentes amostras do Produto Pomada Cicatrizante, não apresentaram crescimento bacteriano em nenhum dos tempos testados, após o período de incubação.

Com base no exposto é possível afirmar que o produto foi considerado um antisséptico satisfatório, sendo APROVADO no estudo, devido a não ocorrência de crescimento microbiano.

Publicações Sobre o Produto

- Depoimento de proprietária sobre o Gato Ferrugem: https://www.ibasa.com.br/blog/cases-de-sucessoserie-cuida-de-mim-aplicacao-da-pomadacicatrizante-ibasa-2-3

- Depoimento de proprietária sobre o Gato Siam: https://www.ibasa.com.br/blog/cuida-de-mim-ibasasiam-2-7

- “Ação Cicatricial de um novo produto em feridas abertas contaminadas e não contaminadas” Disponível em: https://parse.vetsmart.com.br/parse/files/XhI4EJ09WGTwlYIT8kpQDrsVEsCjwatFNHDHQOEi/vetsmart-contents_Documents_DC_Ibasa_Acao_Cicatricial_Produto_Feridas_Abertas_Contaminadas_Nao_Contaminadas.pdf. 

Referências Bibliográficas

ABLA, L.E.F.; ISHIZUKA, M.M.A. Fisiopatologia das Feridas. In: FERREIRA, L.K. Manual de Cirurgia Plástica. Atheneu, São Paulo, 1995

ACKERMANN, M.R. Inflammation and healing. In: ZACHARY, J.F.; MCGAVIN, M.D. Pathologic basis of veterinary disease. 5 ed, Missouri: Elsevier, 2012.

ATIYEH et al., 2009. Wound cleasing, topical antiseptics and wound healing. International Wound Journal, 6(6):420-430.

BOWLING, M.W. et al., 2004. Cutaneous wound healing in the cat: a macroscopic description and comparison with cutaneous wound healing in the dog. Veterinary Surgery, 33:579-587.

BOWLING, M.W.; HENDERSON, R.A. 2006. Differences in cutaneous wound healing between dogs and cats. Veterinary Clinics Small Animal Practice, 36 (Wound management):687-692.

DEMETRIOU, J. STEIN, S. 2011. Causes and management of complications in wound healing. In Practice, 33:391-400.

DERNELL, W.S. 2006. Initial wound management. Vet Clin Small Anim, 36:713-738.

FREITAS, C.R. Tratamento Tópico de Feridas: Revisão de Bibliografia. Graduação (Monografia) em Medicina Veterinária. Universidade de Brasília, Brasília, 57f, 2014

GERBA, C.P. 2015. Quaternary Ammonium Biocides: Efficacy in Application. App. Envirom. Microbiol., 81(2):464-469.

GIRARDI, R.C.G. Comportamento de matrizes de colágeno utilizadas no tratamento de feridas planas induzidas em pele de rato. Dissertação (Mestrado) em Bioengenharia. Universidade de São Paulo, São Carlos, 101f, 2005.

HANKS, J.; SPODNICK, G. 2005. Wound healing in the veterinary rehabilitation patient. Vet Clin Small Anim., 35:1453-1471.

HENGEL, T.V. et al. Wound management: a new protocol for dogs and cats. In: KIRPENSTEIJN, J.; HAAR, G.T. Reconstructive surgery and wound management of the dog and cat. London: Manson Publishing, 2013.

HEDLUND, C.S. Surgery of Integumentary System. In: FOSSUM, T.W. Small animal surgery, 3 ed. Missouri: Mosby Elsevier, 2007.

LOPES, M.A.I. Abordagem e maneio médico-cirúrgico de feridas abertas em cães e gatos: caracterização etiológica e estudos de padrões traumáticos. Dissertação (Mestrado) em Medicina Veterinária. Universidade de Lisboa, Lisboa, 120f, 2016.

MARCEU, R.H. Cicatrização cutânea por segunda intenção em pequenos animais. Graduação (Trabalho de Conclusão) em Medicina Veterinária. Universidade Estadual Paulista, Botucatu, 23f, 2010.

PAULINO, C.A. Antissépticos e desinfetantes. In: SPINOSA, H.; GORNIAK, S.; BERNARDI, M. Farmacologia aplicada a Medicina Veterinária. 4ª ed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 2006.

REINKE, J.M.; SORG, H. 2012. Wound Repair and Regeneration. Eur Surg Res, 49:35-43.

SIMAS, S.M. O Tratamento de Feridas Cutâneas em Cães e Gatos. Graduação (Monografia) em Medicina Veterinária. Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, 112f., 2010.

SLATTER, D. Manual de Cirurgia de Pequenos Animais. 2a ed., v.1, São Paulo: Manole, 1998.

VOLK, S.W.; BOHLING, M.W. 2013. Comparative wound healing: Are the small animal veterinarian´s clinical patients na improved traslational model for human wound healing research? Wound Rep Reg, 21:372- 381.

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